ESTUDIO TAXONÓMICO DE LAS ESPONJAS DE LA BAHIA DE MAZATLÁN SINALOA, MÉXICO

Trabajo recibido el 25 de junio de 1985 y aceptado para su publicación el 24 de octubre de 1985.

RESUMEN

INTRODUCCIÓN

El presente trabajo es el primero sobre taxonomía de Porifera de la costa rocosa del Pacifico tropical mexicano, que aunado a varios trabajos en proceso sobre el mismo litoral, proporcionarán un mayor conocimiento del phylum Porifera de las aguas mexicanas.

Las esponjas del litoral Pacífico Americano han sido poco estudiadas, los trabajos existentes para Norte y Centroamérica datan desde 1882, con Carter quien describió 4 especies de esponjas que fueron colectadas frente a la costa de Acapulco por el yate "Argo". En 1904, Wilson describió una colección de esponjas obtenida frente a las costas de México, Centro y Sudamérica a bordo del buque "Albatros". En 1910, Lendenfeld estudió las esponjas de la familia Geodiidae del Pacífico tropical oriental. De Laubenfels, estudió colecciones de esponjas de California, EUA, de Baja California, México y de la región de Panamá en 1932a, 1935 y 1936b respectivamente. Por último Bakus en 1966, realizó un estudio de las esponjas del orden Poecilosclerida del Archipielago San Juan en el estado de Washington.

En relación a los trabajos existentes sobre esponjas del Golfo de California, el primero publicado es el de Dickinson en 1945, con una descripción breve de 66 especies colectadas a lo largo del Golfo. En 1978, Hofknecht estudió 14 especies de esponjas de Puerto Peñasco y Brusca (1980) en su publicación sobre invertebrados, menciona 20 especies de esponjas.

Las esponjas, objeto de este estudio fueron colectadas durante el periodo comprendido entre mayo de 1981 a agosto de 1982, a profundidades de 1 a 15 m, en la zona rocosa de las islas de la Bahía de Mazatlán: I. Pájaros, I. Venados, I. Lobos, I. Hermano del Norte, I. Hermano del Sur e I. Cardones (Fig. I). El estudio de las esponjas se realizó de acuerdo a la metodología tradicional, Green (1977) y Gómez y Green (1984). Los especímenes estudiados forman parte de la colección de invertebrados del laboratorio de Farmacología Marina del Instituto de Ciencias del Mar y Limnología, UNAM.

Fig. 1. Area de estudio. Bahía de Mazatlán, Sin.

Clase Demospongiae

Subclase Tetractinomorpha

Orden Choristida

Familia Geodiidae

Geodia mesotriena

Orden Spirophorida

Familia Tetillidae

Craniella crania

Orden Hadromerida

Familia Clionidae

Cliona celata

Familia Placospongiidae

Placospongia carinata

Familia Tethyidae

Tethya aurantia

Familia Chondrosiidae

Chondrilla nucula

Subclase Ceractinomorpha

Orden Poecilosclerida

Familia Mycalidae

Mycale (Carmia) microsigmatosa

Zygomycale parishii

Familia Myxillidae

Myxilla incrustans

Tedania nigrescens

Damiriana hawaiiana

Orden Haplosclerida

Familia Haliclonidae

Sigmadocia coerulea

Orden Dictyoceratida

Familia Spongiidae

Hyatella intestinalis

Cydonium mulleri Lambe, 1893: 72.

Geodia mesotriena Lendenfeld, 1910: 96; de Laubenfels. 1932a: 25; Dickinson, 1945: 42; Hofknecht, 1978: 55; Bakus y Abbott, 1980: 31; Brusca, 1980: 42.

Esponja masiva-incrustante con diámetro de 3 a 12 cm (Fig. 2).

Su color es vivo es castaño en la parte superior y blanca en su base y los lados, preservada en alcohol es totalmente blanca con las depresiones de color castaño.

Tiene una superficie híspida con varias depresiones de 1 a 2 mm de profundidad, de forma circular u oval, con diámetro de 5 hasta 17 mm, dentro de ellas se localizan de 3 a 30 ósculos, con diámetro de 0.5 a 2 mm.

Su consistencia es dura, rígida, debido a que su corteza está formada principalmente por esterrásteres y tilásteres y tiene un grosor de 620 µm a 2 mm. En esta corteza se observan ostios de 30 a 165 µm de diámetro y canales de 62 a 180 µm de diámetro.

El endosoma presenta una estructura radial basada principalmente de espículas trienas y estrongilóxeas orientadas del centro a la periferia, con canales de luz circular de 16 µm y canales de luz oval de 800 µm.

Presenta diversos tipos de espículas:

1) Estrongilóxeas de 150 a 165 µm por 4.5 a 6 µm.

2) Oxeas de 1015 a 1610 µm por 18.5 a 28 µm.

3) Mesoprotrienas de 1720 a 2100 µm por 12 µm (Fig. 3).

4) Plagiotrienas por lo general dispuestas por debajo de la corteza y perpendicular a ésta su cladoma llega a medir hasta 415 µm de longitud y el rabdoma de 297 a 1237 µm por 22 a 30 µm.

5) Anatrienas con medidas similares a las plagiotrienas (Fig. 4). Estas trienas como las plagiotrienas, pueden medir hasta 10 mm de longitud, según de Laubenfels, 1932a, pero en el proceso para su observación, se fracturan.

1) Esterrásteres con diámetro de 65 a 87 µm con la secuencia de su formación o transicionales (Figs. 5 a 11).

2) Estrongilásteres con diámetro promedio de 6 µm (Fig. 12).

3) Oxiásteres con diámetro de 18 a 22.5 µm confinadas al endosoma (Fig. 13).

Localidad: Isla de Lobos, Isla Hermano del Sur e Isla Cardones.

Alcyonium cranium Müller, 1776: 255.

Craniella crania (Müller) de Laubenfels, 1949b: 25; Wells, et al., 1960: 235; Little, 1963: 60.

Esponja semiesférica de 11 cm de longitud y 5 cm de diámetro mayor, dividida superficialmente a lo largo por 4 a 6 gajos con una depresión en la parte apical en donde se encuentran los ósculos y una estructura de tipo filamentoso en su base con la que se fija al sustrato, formada principalmente por espículas anatrienas con gran cantidad de particulas foráneas adheridas (Fig. 14).

Fig. 2. Geodia mesotriena. Fig. 3. Detalle de una mesoprotriena, 540x de G. mesotriena. Fig. 4. Detalle de una plagiotriena, 2200X de G. Mesotriena.

Figs. 5 a 8. Secuencia de la formación de una esterráster de G. mesotriena (Fig. 5: 4000X. Fig. 6: 940X. Fig. 7: 780X. Fig. 8: 2600X).

Figs. 9 a 11. Continuación de la secuencia de la formación de una esterráster de G. mesotriena (Fig. 9: 3600X. Fig. 10: 2600X. Fig. 11: 780X). Fig. 12. Estrongiláster de G. mesotriena, 7200X.

Su color en vivo es naranja a amarillo castaño, preservada en alcohol es rosa.

Su consistencia es poco comprensible.

Su superficie es altamente híspida, semejando un terciopelo.

El endosoma es básicamente radial, constituido por haces espiculares y espículas dispersas.

Presenta 5 tipos de espículas:

A) Macroscleras

1) Oxeas de 475 a 1600 µm por 7 a 15 µm, con sus extremos ligeramente telescóspicos.

2) Protrienas con rabdoma de 230 a 1400 µm por 0.6 a 6 µm (Figs. 15 y 16).

3) Prodiena con cladoma de 22 a 77 µm y rabdoma de 1550 a 1670 µm por 5 µm.

4) Anatriena con rabdoma de 620 µm. por 3.5 a 5 µm (Fig. 17).

B) Microscleras

1) Sigmas espinadas de 10.5 a 15 µm de longítud (Figs. 18 y 19).

Localidad: Estero Urias.

Cliona celata Grant, 1826, 79; de Laubenfels, 1932a: 47; 1949a: 23; Hartman, 1958: 16; Wells, et al., 1960: 230; Little, 1963: 57: Brusca, 1980: 45.

Esponja perforadora de material calcáreo, su forma es incrustante o masiva, ocultando su naturaleza perforadora. Sin embargo, en ocasiones las perforaciones son aparentes como en este caso sobre la concha del caracol Muricanihus princeps, mismas que midieron de 0.5 a 3 mm de diámetro y sus galerías de 4 a 5 mm de diámetro (Fig. 20).

Su color en vivo es amarillo, preservada en alcohol es castaño en el exterior y amarillo en el interior.

La superficie presenta ostios de 3 a 8 µm de diámetro.

La estructura que se logró observar consiste de paquetes de tiloestiles paralelos a la superficie además de espículas dispersas hacia el interior.

Presenta solamente espículas tiloestiles que miden de 210 a 300 µm por 3 a 10. 5 µm, la cabeza de éstas varía en su forma de esferica a semiesferica y algunas veces no se encuentra en el extremo de la espícula (Figs. 21 y 22).

Localidad: Isla Hermano del Sur.

Geodia carinata Bowerbank, 1858: 309, 314; 1864: 254; 1874: 298; 1875: 295.

Placospongia sp Carter, 1880: 53.

Placospongia intermedia Sollas, 1888: 272; de Laubenfels, 1936b: 454.

Placospongia mixta Thiele, 1900: 72.

Placospongia carinata Carter, 1879: 148; Ridley, 1884: 481; Sollas, 1888: 272; Lindgren, 1897: 485; 1898: 45; Vosmaer y Vernhout, 1902: 3; Dendy, 1905: 126; 1916: 132; 1921: 144; Hentschel, 1912: 324; Lévi, 1956: 10; Burton, 1959: 213; Little, 1963: 56; Hechtel, 1965: 62.

Esponja incrustante dividida en placas de forma irregular, con elevaciones a manera de cordillera en cuya parte central se encuentra un surco de 1 mm de ancho, mide de 3 a 4 mm de grosor y cubre una área de 9 por 5 cm (Fig. 23).

Su color en vivo es castaño rojizo en el exterior y amarillo en el interior, preservada en alcohol es castaño oscuro en el exterior y blanco grisáceo en el interior.

La consistencia de su corteza es dura, la de su interior es firme.

Su superficie es lisa en las placas, los ósculos así como los ostios se localizan en los surcos de las elevaciones.

El ectosoma está formado por una corteza de 1 a 2 mm de grosor, esclerosada por microscleras esterrásteres fuertemente compactadas.

El endosoma contiene tractos de tiloestiles de hasta 250 µm de diámetro que se dirigen adelgazándose hacia la base de los surcos.

Presenta diversos tipos de espículas

A) Macroscleras

1) Tiloestiles o subtiloestiles de 198 a 718 µm por 3.5 a 13.5 µm (Fig. 24).

B) Microscleras

1) Esterrásteres de 24 a 46.5 µm por 36 a 60 µm (Figs. 25, 26 y 27).

2) Espirásteres de 15 a 40.5 µm por 3.5 a 7 µm, con variaciones en su forma como en las figuras 24 y 28.

3) Microestrongiles de 64 a 80 µm por 3.5 a 5 µm.

Localidad: Estero Urias.

Fig. 13. Oxiáster de G. mesotriena, 4400 X. Fig. 14. Craniella crania. Fig. 15. Protriena de C. crania, 860X. Fig. 16. Protriena y sigmas de C. crania, 1800 X.

Fig. 17. Anatriena de C. crania, 1100X. Fig. 18 y 19. Sigmas de C. crania, 6600X y 6000X respectivamente.

Fig. 20. Clionacelata en Muricanthus princeps.. Figs. 21 y 22. Detalle de tiloetiles de C. celata, 2600X en ambos casos. Fig. 23.Placospongia carinata.

Fig. 24. Espiráster y detalle de un tiloestile de P. carinata, 1500X. Fig. 25. Esterrásteres de P. carinata, 480X. Fig. 26. Esterráster de P. carinata, 1300X. Fig. 27. Hilum de una esterráster de P. carinata 2600X.

Alcyonium aurantium Pallas, 1766: 210.

Tethya aurantia Topsent, 1900: 294; de Laubenfels, 1932a: 44; 1935: 11; 1936b: 462; Dickinson, 1945: 40; Little, 1963: 58; Hofknecht, 1978: 55; Brusca, 1980: 46; Bakus y Abbott, 1980: 32.

Esponja semiesférica de 2.5 cm de diámetro (Fig. 29). Su color en vivo es anaranjado y preservada en alcohol se torna blanco amarillento.

Su consistencia es firme, no comprensible. Superficie tuberculada al mismo tiempo que híspida, los tubérculos miden de 1 a 2 mm de diámetro por 0.5 mm de alto.

El ectosoma es una corteza de 1 mm de grosor formada principalmente por haces espiculares de estrongilóxeas y tilásteres, que sobresalen a la superficie formando parte de los tubérculos.

El endosoma presenta una estructura radial evidente por la dirección que llevan los haces espiculares desde el centro de la esponja a la superficie.

Presenta 5 tipos de espículas:

A) Macroscleras

1) Estrongilóxeas de 427 a 1400 µm por 6.7 a 24 µm.

2) Oxeas muy escasas, posiblemente formas transicionales a estrongilóxeas, de 95 a 105 µm.

B) Microscleras

1) Esferásteres con diámetro de 45 a 60 µm (Figs. 30 y 31).

2) Oxiásteres con 5 a 8 rayos espinados que pueden presentar procesos bífidos o trífidos en su terminación, tienen un diámeto de 25.5 a 35.5 µm (Fig. 32).

3) Tilásteres con 6 a 10 rayos espinados en los extremos con diámetro de 9 a 12 µm (Figs. 30, 32 y 33).

Localidad: Estero Urias y Punta Chile.

Chondilla nucula Schmidt, 1862: 49; 1870: 26; Schulze, 1877: 108; Carter, 1881: 249; 1882: 268; 1885: 200; 1886: 277; Topsent, 1890: 27; 1892: 56; 1918: 601; 1925: 630; Keller 1891: 327; Lendenfeld, 1897: 37; Wilson, 1902: 386; Verrill, 1907: 334; Annandale, 1915: 470; Babic, 1922: 269; Burton, 1924: 206; 1934: 522; 1936: 7; Dendy, 1924: 314; Arndt, 1927: 138; Vosmaer, 1933-35: 293; de Laubenfels, 1936b: 464; 1949a: 22; 1950a: 133; 1954: 250; 1956: 2, 4; Sarà, 1958: 216; Lévi, 1959: 121; Vacelet, 1959: 46; 1961: 30; Sarà y Siribelli, 1960: 31; Tabb y Manning, 1961: 564; McNulty, et al., 1962: 229; Sarà y Melone, 1963: 358; Little, 1963: 64; Storr, 1964: 43; Hechtel, 1965: 74; 1969: 34; Wiedenmayer, 1977: 186; Hofknecht, 1978: 55.

(No)Chondrilla nucula de Laubenfels, 1935: 12.

Chondrilla embolophora Schmidt, 1862: 39.

Chondilla australiensis de Laubenfels, 1954: 249 (No Carter, 1873).

(No) Chondrilla nuculaKieschnick, 1896: 534.

Esponja incrustante con un grosor de 1 a 3 mm y una extensión de 2cm² aproximadamente (Fig. 34). Su color en vivo es castaño claro y preservada en alcohol es blanquecino con tonos castaño claro.

Se han descrito especímenes amorfos-lobulados de hasta 1 cm de grosor con una cobertura de más de 10 cm² y de color castaño claro u oscuro.

Su consistencia es firme, poco comprensible.

Su superficie es lisa a microtuberculada, suave al tacto y brillosa. Se observó un sólo ósculo de 0.5 mm de diámetro, los ostios no son aparentes.

El ectosoma consiste de una corteza de 247 a 309 µm de grosor, formada de esferásteres.

El endosoma es carnoso con esferásteres dispersos irregularmente.

Presenta únicamente espículas microscleras del tipo esferáster con deformaciones en sus rayos, su diámetro varía de 17 a 34.5 µm (Figs. 35 y 36).

Localidad: Isla Hermano del Norte.

Mycale (Carmia) microsigmatosaArndt, 1927

Mycale fistulata Hentschel, 1911 var. microsigmatosa Arndt, 1927: 144.

Mycale (Carmia) microsigmatosa Van Soest, 1984

Mycale cecilia de Laubenfels, 1936b: 447; 1950b: 124. (No)

Mycale ceciliaWells, et al., 1960: 212.

?Mycale senegalense Lévi, 1952: 46.

Mycale microsigmatosa Hechtel, 1965: 47.

?Mycale sanguinea Tsurnamal, 1969: 349.

?Mycale lissochela Bergquist, 1965: 168.

Esponja incrustante con un grosor desde 1 mm hasta 1.5 cm y cubriendo una área de 2 a 10 cm² (Fig. 37).

Su color en vivo es anaranjado o rojo brillante, preservada en alcohol se torna amarillo claro o pardo.

Su consistencia es ligeramente rugosa, con ósculos de 0.5 mm a 1 mm de diámetro y ostios pequeños de 6 a 7.5 µm de diámetro.

El ectosoma consiste de una demis bien diferenciada en la que se localizan tractos cortos, ramificados y algunos curvados y plumosos, se encuentran todos los tipos de espículas de esta especie.

Fig. 28. Espiráster de P. carinata, 7800X. Fig. 29. Tethya aurantia. Fig. 30. Esferásteres y tilásteres de T. aurantia, 320X. Fig. 31. Esferáster de T. aurantia, 2400 X.

Fig. 32. Oxiáster y tilásteres de T. aurantia, 1500X. Fig. 33. Tiláster de T. aurantia, 7200X. Fig. 34. Chondrilla nucula. Fig. 35. Esferásteres de C. nucula, 480 X.

El endosoma contiene material foráneo y presenta una reticulación de tractos multiespiculares de 37.5 a 60 µm de diámetro, que comúnmente se ramifican en forma plumosa y pocas veces se anastomosan.

Presenta espículas subtiloestiles de 190 a 270 µm por 5 a 9 µm (Fig. 38), sigmas con una longitud de 20 a 45 µm (Figs. 38 y 39) y anisoquelas palmeadas con ala mayor de 6 a 7.5 µm y longitud total de 12 a 21 µm (Figs. 38 y 40).

Localidad:Isla Pájaros, Isla Venados, El Cuello, Isla Lobos, La Escollera e Isla Cardones.

Fig. 36 Esferáster de C. nucula, 2220X. Fig. 37. Mycale microsigmatosa. Fig. 38. Subtiloetiles, sigmas y anisoquelas de M. microsigmatosa, 540X.

Raphiodesma parishii Bowerbank, 1875: 283.

Esperia parishii Ridley, 1884: 436.

Esperella parishii Ridley y Dendy, 1887: 65; Dendy, 1905: 159.

Zygomycale parishii Topsent, 1929: 431; de Laubenfels, 1950b: 25: 1956: 3; Lévi, 1956: 14; Hechtel, 1965: 48.

Mycale parishii Burton y Rao, 1932: 328.

Esperia plumosa Carter, 1882: 298; 1887: 72.

Esperella plumosa Dendy, 1905: 159; 1916: 121; Dendy y Frederick, 1924: 503.

Esperella ridleyiLendenfeld, 1888: 211; Hallmann, 1914: 402.

Mycale isochela Hentschel, 1911: 297.

Mycale pectinicola Hentschel, 1911: 299.

Mycale (Aegogropila) angulosa (Duchassaing y Michelotti) Van Soest, 1984: 16.

(No) Mycale angulosa de Laubenfels, 1936a: 116.

Esponja masiva que puede tener ramas de 15 cm de longitud y hasta 2 cm de diámetro y cubrir una área de 10 a 18 cm de diámetro (Fig. 41).

Su color en vivo es gris azuloso o azul claro, preservada en alcohol se torna amarillo pálido o lila claro.

Su consistencia es compresible, firme en algunas partes, cuando se seca, es dura y quebradiza.

Su superficie tiene lóbulos y rugosidades, al microscopio toda la superficie se observa híspida, las espículas sobresalen de 43 a 62 µm. Los ósculos tienen un diámetro desde menos de 1 mm hasta 5 mm.

El esctosoma se encuentra bien diferenciado del endosoma y se desprende con facilidad, está constituido por una reticulación de tractos espiculares de 30 a 68 µm de diámetro, que forman mallas triangulares y cuadrangulares de 124 a 178 µm de abertura, entre las cuales se observan los ostios, separados por una pared muy delgada y con un diámetro promedio de 30 a 45 µm llegando a medir hasta 70 µm. En cada una de las uniones de las mallas, se presenta un haz de espículas plumoso que se proyecta hacia el exterior. En el ectosoma son frecuentes las rosetas de anisoquelas grandes en grupos de 10, además de encontrarse todos los demás tipos de espículas.

El endosoma es microcavernoso, con escasos espacios subdermales, está constituído por tractos espiculares de 93 a 185.5 µm de diámetro, sin un erreglo definido. No se observaron mallas. También en el endosoma se encuentran todos los tipos de espículas de esta especie.

Presenta diversos tipos de espículas, todas ellas presentes en los 7 especínenes estudiados.

A) Macrosclera

1) Subtiloestiles de 199 a 300 µm por 6.7 a 10.5 µm (Figs. 42 y 43).

B) Microscleras

1) Anisoquelas palmeadas I de 37 a 47 µm de longitud (Fig. 42, 43 y 44).

2) Anisoquelas palmeadas II de 9 a 21 µm de longitud.

3) Isoquelas palmeadas de 9 a 12 µm de longitud (Fig. 42, 43 y 45).

4) Sigmas I, algunas con forma de s de 61 a 84 µm de longitud por 7 µm de diámetro (Figs. 42 y 43).

5) Sigmas II también con forma de s de 9 a 31.5 µm de longitud.

6) Toxas de 36 a 72 µm de longitud, algunas fueron observadas alineadas una con otra (Figs. 42 y 43).

7) Ráfides muy finos con longitud de 30 a 34.5 µm.

Localidad:Isla Pájaros, Isla Venados, Isla Lobos y La Escollera.

Alcyonium incrustansEsper, 1805-14 (ver Esper, 1830: 47).

Halichondria incrustans Johnston, 1842: 122.

Myxilla (Halichondria) rosacea(Lieberkühn, 1859) Schmidt, 1862: 71.

Myxilla barentsi Vosmaer, 1885: 27.

Myxilla lacunosa Lambe, 1893: 70.

Myxilla rosacea var. lieberkuhn Lambe, 1893: 71; de Laubenfels, 1950a: 17.

Myxilla behringensis Lambe, 1895: 121.

Myxilla parasitica de Laubenfels, 1930: 27; nec Lambe 1894: 31.

Ectyodoryx parasitica de Laubenfels, 1936a: 84; nec Lambe, 1894: 31.

Burtonanchora lacunosade Laubenfels, 1936a: 94; nec Lambe, 1893: 70.

Myxilla incrustans (Esper) Bakus, 1966: 494.

Esponja incrustante de 2 cm de grosor por 7 cm de diámetro (Fig. 46).

Su color en vivo es naranja, preservada en alcohol se torna castaño pálido.

Su consistencia es poco comprensible, firme.

Presenta una superficie irregular, rugosa, con ósculos de menos de 1 mm a 1. 5 mm de diámetro.

El ectosoma es una capa fina que en partes es translúcida, los ostios son numerosos con un diámetro de 21.5 o 30 µm y separados entre sí por espacios de 10.5 a 35 µm. Presenta espacios subdermales de 495 µm de amplitud y abundancia en tornotes.

Fig. 39. Sigma de M. microsigmatosa, 2200 X. Fig. 40. Anisoquela palmeada de M. Microsigmatosa, 4400 X. Fig. 41. Zygomycale parishii.

Fig. 42 y 43. Subtiloestiles, anisoquelas, isoquelas, sigmas y toxas de Z. parishii, 40OX y 320X respectivamente. Fig.. 44. Anisoquelas palmeadas I de Z. parishii, 3000X. Fig. 45. Isoquela palmeada de Z. parishii, 7800X.

Fig. 46. Myxilla incrustans. Fig. 47. Acantoestiles, acantotiloestiles, tornotes, isoquelas y sigmas de M incrustans, 440X. Fig. 48. Acaintoestiles, tornote y sigmas de M. incrustans, 2000X. Fig. 49. Isoquelas arqueadas de M incrustans, 4000X.

El endosoma en general no tiene una retitulación bien definida, presenta tractos multiespiculares dispersos así como espículas sin arreglo definido, en algunas zonas fué posible observar una reticulación isodictial.

Presenta diversos tipos de espículas:

A) Macroscleras

1) Acantoestiles o acantotiloestiles de 100 a 145 µm por 5 a 7.5 µm (Figs. 47 y 48).

2) Tornotes de 133 a 160 µm por 3 a 5 µm (Fig. 48).

B) Microscleras

1) Isoquelas arqueadas de 12 a 16.5 de longitud (Figs. 47 y 49).

2) Sigmas con forma de s, j, c, de 15 a 30 µm de longitud (Fig. 48).

Los especímenes estudiados no presentan isoquelas y sigmas de dos tamaños ni dimensiones tan grandes para el resto de las espículas como lo reporta Bakus (1966).

Localidad:Isla Pájaros e Isla Hermano del Sur.

Reniera nigrescens Schmidt, 1862: 64.

Tedania nigrescens Gray, 1867: 495, Dickinson, 1945: 19; Hofknecht, 1978: 53; Brusca, 1980: 43.

Esponja incrustante de 4 cm de diámetro con algunas prolongaciones dendriformes (Fig. 50).

Su color en vivo es anaranjado, preservada en alcohol es castaño claro.

Su consistencia es compresible, blanda.

Su superficie es rugosa formando surcos pequeños, al microscopio es híspida, sus ósculos distribuídos irregularmente tienen un diámetro de 0.5 a 2 mm y sus ostios de 4 a 7 µm.

El ectosoma no tiene una reticulación con arreglo definido, está formada por un conjunto denso de espículas tilotes; estiles y oniquetes.

El endosoma también se encuentra con una reticulación indefinida con mallas finas de 60 µm de abertura.

Presenta espículas estiles algunos curvos de 154 a 174 µm por 4.5 a 10.5 µm, tilotes de 153 a 172.5 µm por 3 a 4.5 µm con ambos extremos espinados y oniquetes o ráfides de 93 a 117 µm por 1. 5 µm espinados a todo lo largo (Fig. 51, 52 y 53).

Localidad: Isla Pájaros, Isla Hermano del Norte y Escollera.

Damiriana hawaiiana de Laubenfels, 1950b; 14.

Esponja masiva incrustante cubriendo una área de 36 cm² y un grosor de 2 a 3 cm (Fig. 54).

Su color en vivo es anaranjado y preservada en alcohol es amarillo pardo.

Su consistencia es comprensible y firme.

Su superficie es rugosa con gran cantidad de material foráneo. Los ósculos miden 5 mm de diámetro en promedio.

Presenta una dermis fina y transparente en algunas partes, con paquetes espiculares dispuestos tangencialmente a la superficie. Se observan ostios de 100 a 280 µm de diámetro.

El endosoma no tiene una reticulación definida, en algunas partes se observan tractos que forman triángulos, algunos de estos tractos, miden de 20 a 37 µm de diámetro.

Presenta 4 tipos de espículas:

A) Macroscleras

1) Oxeas fusiformes y astadas localizadas principalmente en el endosoma, miden 151 a 200 µm por 6 a 7 µm (Fig. 55).

2) Tilotes de 170 a 205 µm por 4.5 a 6 µm (Fig. 55).

B) Mcroscleras

1) Isoquelas arqueadas con longitud de 15 a 36 µm (Fig. 56).

2) Sigmas con longitud de 9 a 15 µm (Fig. 55).

Localidad: Isla Pájaros e Isla Venados.

Sigmadocia caeruleaHechtel, 1965: 30; Van Soest, 1980: 21.

Haliclona coerulescens de Laubenfels, 1936b: 444.

(No) Reniera coerulescens Topsent, 1918.

Esponja incrustante gruesa a masiva, mide desde 3 a 40 cm de diámetro por 2 a 25 cm de alto, en ocasiones con sus ósculos en el extremo de una formación volcanoide o tubular, en algunas partes de la esponja se encuentran procesos. digitiformes carnosos de 2 a 3 cm de longitud. Asociada a esta esponja se encuentra una alga calcárea distribuída al parecer, en todo su cuerpo excepto en los procesos digitiformes (Fig. 57 y 58).

Su color en vivo es azul claro con su base blanca, preservada en alcohol se torna blanca o parda.

Fig. 50. Tedania nigrescens. Fig. 51. Estiles, tilotes y oniquetes de T. nigrescens, 360X. Fig. 52. Detalle de un extremo espinado de un tilote de T nigrescens, 7200X.

Fig. 53. Detalle de 2 oniquetes de T nigrescens, 5400X. Fig. 54. Damiriana hawaiiana. Fig. 55. Oxeas, tilotes., isoquela y sigma de D. hawaiiana, 400X.

Fig. 56. Isoquela de D. hawaiiana, 600 X. Figs. 57 y 58. Sigmadocia coerulea.

Su consistencia es poco compresible y se desmorona fácilmente, seca es altamente quebradiza.

La superficie varía de lisa a rugosa dependiendo del efecto del alga calcárea. Los ostios tienen un diámetro de 7 a 15 µm y los ósculos de 2 a 5 mm.

El ectosoma presenta una reticulación isodictial uniespicular, con abertura de malla de 62 µm en promedio.

El endosoma lo forma una reticulación renieroide de tractos ascendentes con 2 a 4 espículas en su interior, con diámetro de 25 a 31 µm y tractos conectivos uniespiculares, formando mallas de 62 a 185 µm de abertura.

Presenta espículas óxeas astadas de 111 a 174 µm por 3 a 7.5 µm y sigmas que se encuentran tanto incluídas en la espongina como en los tractos, miden de 19.5 a 24 µm de longitud (Figs. 59 y 60).

Localidad:Isla Pájaros, Isla Venados, Isla Lobos y Escollera.

Spongia intestinalis Lamarck, 1814: 439.

Haytella intestinalis (Lamarck) Lendenfeld, 1889: 116; Topysent, 1932: 84; de Laubenfels, 1948: 41; Bergquist, et al., 1971: 104; Van Soest, 1978: 23.

Hippospongia dura Lendenfeld , 1889: 298.

Hippospongia intestinalis Ridley, 1884: 590; Wilson, 1902: 402; Dendy, 1905: 214.

Hippospongia clathrata Dendy, 1905 (No: Hircinia clathrataCarter).

Hippospongia anomalaPoléjaeff, 1884: 54; Dendy, 1905: 215.

Trypespongia columbia de Laubenfels, 1936a: 13; 1936b: 456.

Aulena columbia de Laubenfels, 1948: 36; 1953: 513; Little, 1963: 34; Storr, 1964: 41.

Spongia bresiliana Boury-Esnault, 1973: 290.

Spongia virgultosa Boury-Esnault, 1973: 290. (No S. virgultosa Schmidt, 1862).

Hyrtios cavernosus (Pallas) Wiedenmayer, 1977: 59,

(No) Hyrtios proteus Duchassaing y Michelotti, 1864.

Spongia cerebriformis fo. insolita Wiedenmayer, 1977: 58.

(No)Spongia cerebriformis Duchassaing y Michelotti, 1864.

(No) Hircinia caracasensis Carter, 1882.

Esponja incrustante a masiva, mide de 3 a 9 cm de extensión y de 0.8 a 4.5 cm de grosor (Fig. 61).

Su color en vivo y preservada en alcohol, es castaño oscuro en su exterior y amarillo pálido en su interior y en su base.

Su consistencia en vivo como preservada en alcohol es compresible.

Fig. 59. Oxeas astadas y sigmas de S. coerulea, 320X. Fig. 60. Sigmas de S. coerulea, 3000X.

La superficie presenta cónulos pequeños de menos de 1 mm de alto y separación entre sí de 0. 5 a 1 mm. Los ósculos son numerosos, tienen un diámetro de 0.5 a 4 mm, se distribuyen irregularmente y algunos sobresalen hasta 2 mm de la superficie.

El ectosoma consiste de una dermis fuertemente pigmentada, fácilmente desprendible, en algunas partes se asemeja a un velo transparente que cubre los canales subdermales, tiene un grosor de 92 a 111 µm y está sostenida por una reticulación indefinida de fibras primarias con diámetro de 62 a 93 µm y fibras secundarias con diámetro de 6 a 25 µm (Fig. 62).

Fig 61. Hyatella intetinalis. Fig. 62. Detalle de la reticulación ectosomal de H. intestinalis, 120X. Fig. 63. Detalle de la reticulación endosomal longitudinal de H. intestinalis, 120X.

El endosoma presenta una reticulación poligonal irregular de fibras de espongina sin médula, de color ámbar, algunas de ellas de forma fascicular. El diámetro de las fibras primarias es de 25 a 60 µm en un especimen y de 62 a 185 en otro, con predominio de 60 µm en ambas, algunas de estas fibras contienen partículas foráneas en su interior. El diámetro de las fibras secundarias es de 12 a 18.5 µm, sin partículas foráneas en su interior y la mayoría de ellas son transparentes. Las mallas tienen una abertura mayor que en el ectosoma, miden de 31 a 618 µm predominando las de 155 µm. Atravesando el endosoma se encuentran canales del sistema acuífero con diámetro semejante al de las mallas (Fig. 63).

Localidad: Isla Pájaros, Isla Hermano del Norte, Isla Hermano del Sur e Isla Cardones.

Se agradece a Agustín Ayala Castañares y su colaboradores administrativos, Su apoyo durante la realización del presente trabajo. Alejandro Gamboa Contreras Y a Sergio Salcedo Martínez por su ayuda en la colecta de esponjas, a Yolanda Hornelas de Uribe por su ayuda en el microscopio electrónico de barrio y a César Merlo Camacho por la impresión de las fotografías.

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